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堿性磷酸酶的分離提取及比活力的測(cè)定

更新時(shí)間:2016-07-15 點(diǎn)擊次數(shù):6251

堿性磷酸酶的分離提取及比活力的測(cè)定

 

一、實(shí)驗(yàn)原理

       堿性磷酸酶(alkaline phosphatase   EC 3.1.3.1簡(jiǎn)稱(chēng)為ALPase)廣泛存于微生物界和動(dòng)物界。ALPase能催化幾乎所有的磷酸單酯的水解反應(yīng),產(chǎn)生無(wú)機(jī)磷酸和相應(yīng)的醇、酚或糖。它也可以催化磷酸基團(tuán)的轉(zhuǎn)移反應(yīng),磷酸基團(tuán)從磷酸酯轉(zhuǎn)移到醇、酚或糖等磷酸受體上。在磷的生物和化學(xué)循環(huán)過(guò)程中,ALPase起了及其重要的作用。在生物體內(nèi)ALPase與磷的代謝直接相關(guān),參與磷與鈣物質(zhì)的消化、吸收、分泌以及骨骼的形成等生理生化過(guò)程。ALPase的作用zui適PH在堿性區(qū)域,一般在PH9.0~10.5范圍內(nèi)。Mg2+對(duì)該酶的活力有顯著的激活使用。

 

       為了獲得好的提取效果,在酶的制備過(guò)程,特別應(yīng)注意以下幾點(diǎn):

       1.選取來(lái)源豐富、酶含量高的新鮮材料。提取工作應(yīng)在獲得材料后立刻開(kāi)始,否則應(yīng)在低溫下保存。

       2.用鹽分級(jí)沉淀是一種應(yīng)用非常廣泛的方法。碳酸銨是zui常用的鹽。操作時(shí),要注意保持緩沖液的合適PH值和溫度。在加碳酸銨時(shí)需事先將其研細(xì),需緩慢加入并及時(shí)攪拌溶解,盡量防止泡沫形成,以免酶蛋白在溶液中表面變性。鹽析生成的沉淀,要靜置20min以上,以使沉淀*,然后方可時(shí)行離心分離。

      3.有機(jī)溶劑沉淀法也常用于蛋白質(zhì)的分離提純。丙酮和乙醇是使用的兩種有機(jī)溶劑。應(yīng)注意在低溫下操作,緩慢加入,充分?jǐn)嚢瑁苊饩植繚舛冗^(guò)高放出大量熱量而使酶蛋白變性。離心收集沉淀后,立即將其溶于適量緩沖液中,以避免酶活力的喪失。

       4.在酶的制備過(guò)程中,每經(jīng)一步處理,都需測(cè)定酶的活力和比活力。唯有比活力提高較大,提純步聚才有效。

        酶活力的分析:通常是以對(duì)—硝基苯磷酸二納(pNPP)為底物,在PH10.1的碳酸鹽緩沖液(含2mmol/L Mg2+)的測(cè)活體系中檢測(cè)酶催化pNPP水解產(chǎn)生黃色的對(duì)硝基苯( pNP)在405 nm處有zui大的吸收峰,可以根據(jù)OD4〇5值的增加計(jì)算酶活力的大小。酶活力定義為在37℃下,以5mmol/L pNPP為底物,在pH 10.1的碳酸鹽緩沖液含2 mmol/L  Mg2+的測(cè)活體系中每分鐘催化產(chǎn)生1 mol/L pNP的酶量定為1個(gè)酶活力單位。酶的比活力定義為每mg蛋白所具有的酶活力單位數(shù)。 

       蛋白質(zhì)濃度的測(cè)定常采用福林-酚試劑(Folin-Phenolreagem)顯色法。

 

二、實(shí)驗(yàn)用品

(一)器材

    (1) 髙速組織搗粹機(jī)和玻璃勻漿器。

    (2) 離心機(jī)。

    (3) 超級(jí)恒溫水浴鍋。

    (4) 酸度計(jì)。

    (5) 722分光光度計(jì)。

    (6)天平、臺(tái)秤。

    (7)透析袋。

    (8)磁力攪拌器。

    (9)冰箱。

    (10)秒表。

    (11)50µL微量進(jìn)樣器。

 

  (二)試劑

     (1)含0.1mol/L NaCl 的0.01mol/L Tris.HCL PH7.5緩沖液:稱(chēng)取三羥甲基氨基甲烷1.214g,NaCl5.8g,溶于蒸餾水中,加入80ml 0.1mol/L HCL,用蒸餾水定容到1000ml。

     (2)正丁醇(分析純)。

     (3) 硫酸銨(分析純)。

     (4) 0.5% NaCl:稱(chēng)取 5 g NaCl 溶于1000 mL蒸餾水中。

     (5) 0.1 mol/L Na2C〇3-NaHC〇3  pH 10.1 緩沖液:分別取(A)液 70mL,(B)液30ml混勻,用酸度計(jì)準(zhǔn)確調(diào)節(jié)pH 10.1。

           (A) 0.1 mol/L Na2C〇3溶液:取 28.6 g Na2C〇3.10H20溶于1000 mL蒸餾水中 。    

           (B) 0.1 mol/L NaHC〇3 溶液:取 8.4 g NaHC〇3 溶于1000 mL蒸餾水中。

     (6) 0.5 mol/L醋酸鎂溶液:稱(chēng)取醋酸鎂107.25 g溶于蒸餾水中,稀釋成1000ml。

     (7) 0.1 mol/L醋酸鈉溶液:稱(chēng)取醋酸鈉8.2 g溶于蒸餾水中,稀釋至1000 ml。

     (8) 0.01 mol/L醋酸鎂-0.01 mol/L醋酸鈉溶液:取0.5 mol/L醋酸鎂20ml醋酸鈉100 mL,混勻后加蒸餾水稀釋至1000 mL。 

      (9) PH8.8 Tris.HCl緩沖液:稱(chēng)取三羥甲基氨基甲烷(Tris)12.1 g,用蒸餾水溶解。并稀釋至1000ml,即為0.1 mol/L Tris溶液。取0.1 mol/L Tris 溶液100mL,加蒸餾水約800ml,再加0.1 mol/L醋酸鎂100 mL,混勻后用1 %醋酸調(diào)節(jié)pH至8.8,用蒸餾水稀釋至1000ml即可。

    (10) 丙酮(分析純)。

    (11) 95%乙醇(分析純)。

    (12) 20 mmol/L Mgcl2:稱(chēng)取 1.904 g Mgcl2溶于1000ml蒸餾水中。 

    (13) 0.1 mol/L NaOH:稱(chēng)取 4 g NaOH 溶于1000ml蒸餾水中。 

    (14)  20 mmol/L 對(duì)硝基苯磷酸二鈉(pNPP):稱(chēng)取371.2 mg pNPP溶于50ml蒸餾水中。

    (15) 底物溶液(5mmol/L pNPP):按以下比例混句(5):(6):(8):H2O=l:0.2:0.50:.28。 

    (16)0.5µmol/mL對(duì)硝基苯酚(pNP=141.1)溶液:稱(chēng)取17.64mg對(duì)硝基苯酚,用蒸餾水溶解并定容至250 mL。

    (17) Folin甲。

    (18) Folin乙 

    (三)材料

          (1) 新鮮牡蠣。 

          (2) 新鮮兔肝。

 

三、實(shí)驗(yàn)程序

  (一)操作方法

     1.牡蠣堿性磷酸酶的分離提取

   (1)稱(chēng)取100g牡蠣(蒸餾水洗凈),加入150預(yù)先冷卻的0.01mol/L Tris.HCL 緩沖液(PH7.5,含0.1mol/L NaCl),于高速組織搗碎機(jī)勻漿1min,量勻漿體積,于冰箱4℃放置3h進(jìn)行抽取。(留勻漿液10ml,采用離心或過(guò)濾,得到上清液,待測(cè)酶的比活力)

   (2)緩慢加入20%(V/V)冰冷的正丁醇,邊加邊攪拌均勻。冰箱放置2~3h。

   (3)室溫離心,4000r/min 30min,收集離心上清液,并量體積。。(留5ml上清液,對(duì)含0.1mol/L NaCl的0.01mol/L Tris.HCL 緩沖液PH7.5透析平衡,待測(cè)酶的比活力。

   (4)在正丁醇處理的上清液中加入研磨細(xì)粉的固體硫酸銨至0.35飽和度(100ml加入20.9g)。緩慢加人,不斷攪拌溶解,置冰箱靜置4 h。

   (5) 室溫離心,4 000 r/min 30 min,收集離心上清液,并量體積。(留5ml上清液,對(duì)0.01mol/L Tris.HCL 緩沖液PH7.5含0.1 mol/L NaCl透析平衡,待測(cè)酶的比活力)。

   (6) 0.35 mol/L飽和硫酸銨上清液,加入固體研磨細(xì)粉的硫酸銨至 0.70飽和度(100ml加入23.8g)。緩慢加入,不斷攪拌溶解,置冰箱靜置4 h。

   (7) 室溫離心,4 000 r/min 30 min,收集沉淀物。(沉淀蛋白上浮,先把下面清液虹吸出來(lái),余少量清液連同沉淀一起離心)

   (8) 得到沉淀物,溶于20mL 含 0.1 mol/LNaCl 的 0.01mol/L ris.HCL 緩沖液PH7.5。裝入透析袋,先對(duì)預(yù)冷的0.5% NaCl透析(常換透析液),至無(wú)S〇4-2被檢測(cè)出為止(可用一定濃度BaCl2溶液檢驗(yàn))。再對(duì)0.01 mol/L Tris HCl pH7.5緩沖液透析平衡。 

   (9) 取出酶溶液,冷凍高速離心(0: 25 000 r/min 30 min)。

   (10) 離心上清液即為粗酶制劑,檢測(cè)酶的比活力。裝人棕色瓶于4冰箱保存。

 

 2.兔肝堿性磷酸酶的分離提取 

   (1) 取2 g新鮮免肝剪碎后,置于玻璃勻漿管中,加入0.01 mol/L醋酸鎂,0.01 mol/L醋酸鈉 6ml,研磨2?3 min。將勻漿倒入刻度離心管中,記錄其體積。吸出0.1ml置于另一試管中,在此試管中加4.9ml PH8.8 Tris HCl緩沖液稀釋?zhuān)郎y(cè)比活力。

    (2) 加2 ml正丁醇于勻漿中,用玻璃棒充分?jǐn)嚢? min左右,然后在室溫中旋轉(zhuǎn)20min。用濾紙過(guò)濾,濾液置于刻度離心管中。

    (3) 濾液中加入等體積的冷丙酮,立即混勻后離心(2 000 r/min)5min,棄去上清液。在沉淀中加入0. 5 mol/L醋酸鎂4 mL,用玻璃充分?jǐn)嚢枋蛊淙芙?,記錄溶液體積。吸取0.1ml。置于另一試管中,在此試管中加入PH8.8 Tris HCl緩沖液4.9ml,待測(cè)比活力。

   (4) 在溶液中緩慢加人冷95%乙醇,使乙醇zui終濃度達(dá)30%,混勻后離心(2000r/min)5min, 將上清液倒人另一離心管中,棄去沉淀。上清液中加人冷95%乙醇,使乙醇zui終濃度高達(dá)60%,混勻后離心(2 500 r/min)5 min,棄去上清液,沉淀中加人0.5 mol/L醋酸鎂3ml,使其充分溶解,并記錄體積。吸取0.2 mL置于另一試管中,加入pH8.8 Tris HCl緩沖液3.8ml,待測(cè)比活力。

  (5) 上述溶液中逐漸滴加人冷丙酮。使丙酮zui終濃度達(dá)33%?;靹蚝箅x心(2000 r/min)5 min,棄去沉淀,上清液則在另一刻度離心管中再緩慢加入冷丙酮。使丙酮zui終濃度達(dá)50%?;靹蚝箅x心((4000 r/min)10 min,,棄去上清液,沉淀即為部份純化的堿性磷酸酶。此沉淀中加入pH8.8 Tris HCl緩沖液4ml使其溶解,并記錄體積,吸取0. 5 mL置于另一試管中,加入pH8.8 Tris HCl緩沖液2 mL稀釋?zhuān)郎y(cè)比活力。

 3.比活力測(cè)定 

   (1)對(duì)硝基苯酚標(biāo)準(zhǔn)曲線的制作:取15支試管編號(hào),0號(hào)一支,1~7號(hào)各二支,按表10-1操作:

 

以對(duì)硝基苯酚的量(µmol/L)為橫坐標(biāo),OD405值為縱坐標(biāo),繪制標(biāo)準(zhǔn)曲線。示出pNP的克分子消光系數(shù)(ε)值。

 (2) 酶活力的測(cè)定:

      取干凈的試管21支,編號(hào),0號(hào)一支作為空白對(duì)照,以緩沖液代替酶液;1~4號(hào)各3支,作為各步的酶樣測(cè)定;1'?4'各2支,作為相應(yīng)的樣品對(duì)照;各管加入1.98ml底物溶液(試劑9),于37恒溫水浴中預(yù)熱5 min, 1?4號(hào)管分別加人各步酶樣20µl,反應(yīng)10min,各管加入2 mL 0.1 mol/L NaOH終止反應(yīng)并顯色,0號(hào)加入20µTris . HCl緩沖液代替酶液,1'?4'管先加入NaOH后再分別補(bǔ)加對(duì)應(yīng)的酶液20 µ。以0號(hào)管調(diào)零點(diǎn),于722分光光度計(jì)測(cè)定各管的OD405值,各個(gè)測(cè)定管的平均OD值減去對(duì)照管的平均OD值,從對(duì)照標(biāo)準(zhǔn)曲線求出產(chǎn)物的µmol數(shù),算出酶活力。

(3)蛋白濃度的測(cè)定:

      上述分離提取的四步酶制劑按一定比例用Tris . HCl緩沖液稀釋?zhuān)♂尡稊?shù)視溶液的蛋白濃度高低而定,以1步驟所提的堿性磷酸酶為例,一般*步和第四步稀釋40?50倍,第二步稀釋5?10倍。第三步稀釋2?5倍。 

取千凈的試管13支,編號(hào),0號(hào)一支作為空白試驗(yàn),加入0.5 mLTris . HCl緩沖液稀釋PH7.5;1~4號(hào)管各3支,作為各步的酶樣測(cè)定,各管加人相應(yīng)的已稀釋的酶液0.5 mL;各管加入Folin-酚試劑甲 4 mL,室溫放置10 min,再加入Folin-酚試劑乙0.5 mL,混勻,放置30 min。以0號(hào)管調(diào)零點(diǎn),于 722分光光度計(jì)測(cè)定各管的OD650值,從對(duì)照標(biāo)準(zhǔn)曲線求出各樣品的蛋白濃度。

 

 4.結(jié)果處理 

  計(jì)算:

式中:為透析后的體積變化系數(shù);B為稀釋倍數(shù),C為由標(biāo)準(zhǔn)曲線査得的pNP(mol/L),t為反應(yīng)時(shí)間,D為由標(biāo)準(zhǔn)曲線査得的蛋白的質(zhì)量(mg),V1為測(cè)定酶活力所用的酶量(ml)。

 

 

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